Abstract
Fundo
O objetivo deste estudo foi determinar se a adição de MicroSilver ou nanosilver partículas a uma ortodôntico iniciador afeta a resistência ao cisalhamento de títulos (SBS) e suporte /falha adesiva
Métodos
incisivos bovinos foram divididos aleatoriamente em seis grupos com 16 amostras em cada um:. no grupo 1 (controle), braquetes foram colados com Transbond XT ™ cartilha . Nos grupos experimentais, MicroSilver (grupos 2 e 3) e nanosilver (grupos 4-6) partículas de tamanhos diferentes foram adicionados a Transbond XT primer e luz curado durante 15 segundos [Grupo 2: 0,1% (w /w) de tamanho de partícula MicroSilver 3,5-18 uM; grupo 3: 0,3% (w /w) de tamanho de partícula MicroSilver 3,5-18 uM; grupo 4: 0,11% (w /w) de tamanho de partícula nanosilver 12,6-18,5 nm; grupo 5: 0,18% (w /w) de tamanho de partícula nanosilver 12,6-18,5 nm; Grupo 6: 0.33% (w /w) de tamanho de partícula nanosilver 12,6-18,5 nm]. Depois disso, braquetes foram colados pela fotoativação do adesivo por 20 segundos. Após 24 horas de armazenagem em água destilada a 37 ° C, o SBS foi medida com uma máquina de ensaio de zwicki 1120. O índice de remanescente adesivo e a prevalência de manchas de prata na superfície da amostra foram determinadas sob 10 × ampliação. . Análise de duas vias estatística de variância foi realizada para comparar SBS, e um teste do qui-quadrado foi utilizado para comparar escores do IRA ea prevalência de pontos de prata
Resultados Não houve diferenças significativas em SBS (controle: 16,59 ± 6,82 MPa; grupo 2: 20,6 ± 4,19 MPa; grupo 3: 16,98 ± 4,84 MPa; grupo 4: 17,15 ± 5,92 MPa; grupo 5: 20,09 ± 3,35 MPa; grupo 6: 16,44 ± 4,51 MPa; p Art & gt; 0,665) e escores do IRA (p = 0,901) foram encontradas entre o grupo controle e um grupo experimental. Apenas os grupos experimentais com partículas nanosilver revelou manchas estatisticamente mais prata no adesivo remanescente.
Conclusões
A adição de pequenas concentrações de MicroSilver ou nanosilver partículas não afecta nem as pontuações SBS nem IRA. A adição de nanopartículas de prata partículas resulta em manchas de prata em o primer restante visível sob 10 × ampliação. Mais estudos são necessários para investigar os anti-cárie desempenho potencial e clínica de primer ortodôntico convencional com nanosilver ou MicroSilver partículas incorporadas.
Palavras-chave
Resistência ao cisalhamento Microsilver Nanosilver Antimicrobial fundo
desmineralização seguido por formação de mancha branca é uma complicação na terapia ortodôntica bem conhecido quando aparelhos fixos são usados [1-5]. O risco de lesões de mancha branca é significativamente menor em ortodontia lingual [6], mas ainda está presente [7]. Ela é causada por um aumento do número de Streptococcus mutans
e outros micróbios patológicos no biofilme, diminuição do pH e higiene oral comprometida [3]. As medidas preventivas que tentam reduzir a desmineralização deve ser independente da adesão do paciente. Estas medidas incluem agentes de ligação antimicrobianos, enxaguatórios bucais transportando agentes antimicrobianos, revestimentos em suportes /fios ou agentes adjacentes aos aparelhos ortodônticos remineralizante [5,7].
Lim et al. [8] notar-se que mais bactérias foram detectadas no adesivo do que no próprio material de suporte. Este fato estimulou o desenvolvimento de adesivos antibacterianas inovadoras destinadas a reduzir a colonização bacteriana. Os recentes desenvolvimentos em adesivos incluíram a incorporação de vidros bioativos em resina auto-mista [9,10] ou selantes [11] ou outros aditivos especiais no adesivo [5,12-15]. Infelizmente, o efeito antimicrobiano destas adições podem persistir por apenas algumas semanas [12,16] e pode resultar em taxas de falhas adesivas superiores [14,16-18]. Outras investigações foram tratadas com óxido de titânio sobre as superfícies de suporte [19] ou a aplicação de nanopartículas, tais como titânio, óxido de titânio, de zinco, óxido de zinco, ouro, prata ou iões de prata [5,20-22]. Estes e outros métodos experimentais foram recentemente revistos por Borzabadi-Farahani et ai. [17].
No entanto, todas as novas abordagens de ligação precisa para cumprir a exigência de uma adesão aceitável, que varia entre 5,9 e 7,8 MPa [23].
Prata tem sido conhecido como um agente antimicrobiano [24] com o efeitos antimicrobianos superiores aos de ouro ou de zinco [25]. nanopartículas de prata são menores do que 100 nm em tamanho e interagir mais de perto com os micróbios. Eles fornecem uma área de superfície maior para a actividade antimicrobiana devido a uma maior proporção superfície-para-volume, em comparação com as partículas de maior dimensão [19,26]. Em ortodontia dois mecanismos são aplicados para a redução bacteriana: a) combinação de materiais odontológicos com nanopartículas; e b) superfícies de revestimento com nanopartículas para impedir a adesão microbiana [17].
Infelizmente, o desempenho clínico de materiais carregados de prata para potencialmente prendendo cárie em odontologia restauradora sempre foi limitado pela descoloração e estética reduzidos [27,28]. tratamento restaurador de cárie em crianças com Ketac-Silver, um cimento de ionômero de vidro contendo 45-55% de partículas de prata [29], resultou em 8,4% com descoloração marginal profunda dentro de um período de 3 anos [27]. Hosoya et al. [28] relatou que o tratamento com diamino fluoreto de prata resultou na descoloração preta de cárie infectadas esmalte primária e dentina.
Portanto, o objetivo deste in vitro
estudo foi avaliar características como resistência ao cisalhamento (SBS) , suporte /falha adesiva e desempenho estética do Transbond XT ™ cartilha após a incorporação de diferentes tamanhos de MicroSilver ou nanosilver partículas.
Métodos
Materiais
bovinos incisivos inferiores foram comprados de Rocholl GmbH (Aglasterhausen, Alemanha), e foram verificadas quanto a rachaduras e /ou cáries. Palavit G® foi adquirido a Heraeus Kulzer GmbH (Wehrheim, Alemanha), cloramina-T a partir de Sigma Aldrich Química GmbH (Taufkirchen, Alemanha) e água a partir de B. Braun Melsungen AG (Melsungen, Alemanha). Microsilver ™ BG-Med (tamanho de partícula 3,5-18 uM) foi adquirido a Bio Portão AG (Nuremberga, Alemanha), nanosilver AgPure W50 ™ (tamanho de partícula 12,6-18,5 nm) foi doada por ras materiais GmbH (Regensburg, Alemanha), de descoberta ® suportes # 790-152-00 por dente 35 foram doados pela Dentaurum GmbH (Ispringen, Alemanha), Transbond ™ XT primer e adesivo foram adquiridos a partir de 3 M Unitek ortodônticos produtos (Monrovia, CA, EUA), gel de ataque ácido Ormco® foi comprado de Ormco (Orange, CA, EUA) e Zircate® Prophy pasta foi comprado de Dentsply DeTrey GmbH (Konstanz, Alemanha). Todos os produtos químicos foram armazenados de acordo com as instruções do fabricante.
Todos os materiais estão listadas na Tabela 1.Table 1 Materiais utilizados neste estudo
material
Fabricante
bovina mandibular incisivos
Rocholl GmbH; Aglasterhausen; Alemanha
Palavit G®
Heraeus Kulzer GmbH; Werheim; Alemanha
Microsilver ™ BG-Med (tamanho de partícula 3,5-18 mm)
Bio Portão AG; Nuremberg; Alemanha
Nanosilver AgPure ™ W50 (tamanho de partícula 12,6-18,5 nm)
ras materiais GmbH; Regensburg; Alemanha
Discovery® suportes # 790-152-00 por dente 35
Dentaurum GmbH & amp; Co. KG; Ispringen; Alemanha
Transbond ™ XT primer e adesivo
3 M Unitek ortodônticos produtos; Monrovia; CA; EUA
Ormco® gravura gel
Ormco Corporation; Laranja; CA; EUA
Zircate® Prophy Paste
Dentsply DeTrey GmbH; Konstanz; Alemanha
cloramina-T hidrato
Sigma Aldrich Química GmbH; Taufkirchen /Munich; Alemanha
do Aqua
B. Braun; Melsungen; Alemanha
espécimes e preparação das soluções de de MicroSilver e nanosilver
bovinos incisivos inferiores foram incluídos em Palavit G® resina quimicamente ativada. A superfície labial foi posicionado virado para cima e paralelo à resina. Os dentes foram armazenados em solução de 0,5% de cloramina-T. Compra de aplicação médica de MicroSilver partículas de uma gama de 0,1-0,5% w /w é recomendado pelo fabricante [30]. De acordo com as recomendações do fabricante, a 500 ppm (0,05% de partículas absoluto ou 0,11% peso /peso [W /W]) partículas nanosilver deve ser utilizado para a inibição bacteriana significativa para revestimentos, 800 ppm (0,08% de partículas absolutos ou 0,18% w /w ) sobre os dispositivos médicos e 1500 ppm (0,15% de partículas absolutos ou 0,33% w /w) para forte redução bacteriana sobre os dispositivos médicos [31]. Portanto, a adição de partículas nanosilver para Transbond XT ™ primário neste estudo baseia-se nestas recomendações.
Para comparar in vitro
desempenho de partículas MicroSilver e nanosilver, as mesmas w /w concentrações foram escolhidas dentro do recomendado gama de concentrações. As soluções de reserva
de 10% (w /w) MicroSilver e 11% (w /w) nanosilver no aqua foram preparadas. Antes do procedimento de colagem, as soluções de reserva foram diluídas em Transbond ™ XT iniciador e misturou-se para a preparação das soluções de trabalho. As soluções foram diluídas da seguinte forma:
0,1% (w /w) solução MicroSilver: diluição 1: 100 (1 ml MicroSilver 10% [w /w] solução estoque e 99 mL de primer)
0,3% (w /w) solução MicroSilver: 3: 100 de diluição (3 ul MicroSilver 10% [w /w] solução estoque e 97 mL de primer)
0,11% (w /w) solução nanosilver: diluição 1: 100 (1 ml nanosilver 11% [w /w] solução estoque e 99 mL de primer)
0,18% (w /w) solução nanosilver: 1,8: 100 de diluição (1,8 ul nanosilver 11% [w /w] solução estoque e 98,2 mL de primer)
0,33% (w /w) solução nanosilver: 3: diluição de 100 (3 ul nanosilver 11% [w /w] solução estoque e 97 mL de primer)
Para SBS testar os dentes foram divididos aleatoriamente em seis grupos de 16 amostras cada: grupo 1: primário, grupo de controlo
grupos experimentais 2-6 Grupo 2: iniciador com 0,1% (w /w) MicroSilver (tamanho de partícula 3,5-18 uM)
Grupo 3: iniciador com 0,3% (w /w) de tamanho MicroSilver (3,5 partícula -18 mm)
Grupo 4: cartilha com 0,11% (w /w) nanosilver (tamanho de partícula 12,6-18,5 nm)
Grupo 5: iniciador com 0,18% (w /w) nanosilver (tamanho de partícula 12,6-18,5 nm)
Grupo 6: iniciador com 0,33% (w /w) nanosilver (tamanho de partícula 12,6-18,5 nm)
procedimento de colagem
grupo 1 (iniciador, grupo de controlo): Os dentes foram polidos com Zircate® Prophy cole, lavado com água e seco ao ar. As superfícies de esmalte foram em seguida gravadas durante 30 segundos com um gel de ácido fosfórico a 37%, em seguida, enxaguada durante 10 segundos com água e secou-se ao ar. Uma película fina de primário foi aplicado sobre a superfície do esmalte gravado, e iluminada com uma fonte de luz (Poli Lux II, KaVo dental, Biberach /Riss, Alemanha) durante 15 segundos. Grupos Então, Transbond XT adesiva foi aplicada à base do suporte, o suporte foi aplicada e prensada na superfície do esmalte, e adesivo excessivo foi removido antes da polimerização, o qual foi realizado durante 20 segundos cada um do lados mesial e distais.
2 a 6 (iniciador com MicroSilver ou nanosilver, grupos experimentais): o procedimento foi o mesmo como no grupo 1, mas em vez de iniciador puro, 0,1% (w /w) ou 0,3% (w /w) mistura MicroSilver iniciador ou 0,11 % (w /w), 0,18% (w /w) ou 0,33% (w /w) de mistura nanosilver iniciador foram usadas. A mistura de iniciadores foi cuidadosamente misturada com uma escova e em seguida aplicado a cada dente.
O procedimento de união foi realizado por um investigador (SB) de acordo com as instruções do fabricante. Todos os dentes foram colados com Discovery® inferiores suportes pré-molares com uma base estruturada a laser; Estes suportes são frequentemente utilizados como referência de acordo com a norma DIN 13990 [32]. A área de superfície média do suporte ligado foi 13,42 mm 2.
Uma fotografia representativa (Canon EOS650D) de um dente ligado na máquina de teste é mostrado na Figura 1. A Figura 1 Fotografias representativas de um dente posicionado em a máquina de ensaio. A: vista lateral; visão lateral B.
medição de resistência ao cisalhamento
Resistência ao cisalhamento de ligação foi medida após 24 horas de armazenamento em água destilada a 37 ° C com uma máquina de ensaios zwicki 1120 (Zwick Roell, Ulm, Alemanha). A força foi aplicada à base do suporte para as asas em direcção uma occlusogingival com uma velocidade de 1 mm /min. A força foi medida em Newtons (N). valores SBS foram calculados pela conversão Newtons em MPa (MPa).
Avaliação de adesivo residual
A quantidade de adesivo residual aderir à superfície do esmalte foi quantificada por meio do índice de remanescente do adesivo (IRA), desenvolvido por Artun e Bergland [ ,,,0],33]. Os escores do IRA de todas as amostras foram gravadas duas vezes pelo mesmo investigador usando um microscópio estereoscópico óptico (Leica Z 6 APO, Leica Microsystems, Wetzlar, Alemanha) com 10 × ampliação. grupos de pontuação são: 0, nenhum adesivo permanece no dente; 1, menos de 50% de o adesivo permanece no dente; 2, mais de 50% de o adesivo permanece no dente; 3, todos adesiva permanece sobre o dente. Compra de análise microscópio electrónico de varrimento (MEV) dos restos adesivas as amostras foram atomizados com ouro /platina num revestidor de pulverização catódica Edwards S150 B (Munique, Alemanha) e analisados por imagem MEV ( Phenom FEI G1 e Phenom Software ProSuite, Eindhoven, Holanda).
Avaliação de manchas de prata após a descolagem
após a descolagem, as superfícies dentárias foram inspeccionados por olho e abaixo de 10 × ampliação com um microscópio estereoscópico óptico para a descoloração [28, 29].
análise estatística
análise estatística foi realizada usando SPSS 21.0.0 (SPSS Inc., Chicago, IL).
para o cálculo do tamanho da amostra para as medições SBS, uma análise de energia para ß-erro (poder & gt; 80).. foi realizada
os dados SBS foram analisados utilizando o teste de Kolmogorov-Smirnov, seguido por análise de variância (ANOVA) e uma análise de sobrevivência de Kaplan-Meier
os dados IRA foram analisados utilizando o teste de Kolmogorov-Smirnov, seguido pelo teste do qui-quadrado. análise de mancha de prata foi realizada utilizando o teste de Kolmogorov-Smirnov, seguido pelo teste do qui-quadrado. Além disso testes qui-quadrado foram usados para analisar as diferenças inter-grupos. P
valores inferiores a 0,05 foram considerados estatisticamente significativos.
Resultados
cálculo do tamanho da amostra
O poder para estas 16 amostras foi 0,818. . Para este poder era necessário um mínimo de 15 amostras por grupo
medição de resistência ao cisalhamento
valores SBS foram as seguintes: grupo 1 (controle): 16,59 ± 6,82 MPa; grupo 2 (iniciador + 0,1% MicroSilver): 20,6 ± 4,19 MPa; grupo 3 (iniciador + 0,3% MicroSilver): 16,98 ± 4,84 MPa; grupo 4 (primário + 0,11% nanosilver): 17,15 ± 5,92 MPa; grupo 5 (iniciador + 0,18% nanosilver): 20,09 ± 3,35 MPa; grupo 6 (primário + 0,33% nanosilver):. 16,44 ± 4,51 MPa
O teste de Kolmogorov-Smirnov para SBS mostrou distribuição normal em todos os grupos experimentais (estatística = 0,045, df = 96, mean square = 2.941, F = 0,905, p
= 0,200). Por isso, foi aplicado ANOVA. Two-way ANOVA não mostrou diferença estatisticamente significativa para SBS entre os grupos experimentais eo grupo controle (p Art & gt; 0,665). De um modo geral, não há diferenças significativas poderia ser detectada entre os grupos, bem como por dois-por-2-comparações de todos os grupos. A Figura 2 mostra os resultados da análise de sobrevivência de Kaplan-Maier. Estatísticas descritivas e os resultados dos testes de ANOVA são apresentados na Tabela 2. Figura 2 de Kaplan-Meier de análise de sobrevivência para todos os grupos experimentais.
Tabela 2 estatística descritiva dos grupos e comparação dos valores de SBS (ANOVA)
Grupos
n
média (DP) [MPa]
Faixa [ ,,,0],MPa]
IC 95% [MPa]
Median [MPa]
IC 95% [MPa]
TB
16
16,59 (6,82)
7,03-31,38
13,25-19,94
15,76
12,55-18,97
TB + 0,1% (w /w) μAg
16
20,6 (4,19)
14,86-30,49
18.55- 22.66
20,00
17,45-22,55
TB + 0,3% (w /w) μAg
16
16.98 (4,84)
6,9-25,78
14,61-19,35
17.55
14,14-20,96
TB + 0,11% (w /w) Nag
16
17,15 (5,92)
11,02-30,18
14,25-20,05
14.34
9,15-19,53
TB + 0,18% (w /w) Nag
16
20,09 (3,35)
14.05 -25,28
18,45-21,74
19,99
17,66-22,32
TB + 0,33% (w /w) Nag
16
16,44 (4,51)
10,55-25,74
14,23-18,65
15,34
8,48-22,20
ANOVA:. Soma dos quadrados = 273,5, df = 93, mean square = 2.941, F
-valor = 0,905, P
-valor = 0,665
Avaliação de adesivo residual
Tabela 3 apresenta os escores do IRA. A determinação de 2 vezes de escores do IRA em dois dias diferentes não mostraram diferenças em tudo, ea fórmula Dahlberg aplicado gerou um erro de zero [34] .table 3 Índice de Adesivo Remanescente (ARI)
pontuação ARI
diferenças Grupo
Grupos
0
1
2
3
Median
TB
0
7
6
3
2
A
TB + 0,1% (w /w) μAg
0
9
4
3
1
A
TB + 0,3% (w /w) μAg
0
8
6
2
1
A
TB + 0,11% (w /w) Nag
0
6
6
4
2
A
TB + 0,18% ( w /w) Nag
0
7
4
5
2
A
TB + 0,33% (w /w) Nag
0
7
5
4
2
A
IRA escores 0, nenhum adesivo permanece no dente; 1, menos de 50% de adesivo permanece no dente; 2, mais de 50% de adesivo permanece no dente; 3, todos adesiva permanece no dente.
Todos os grupos que não são significativamente diferentes uns dos outros são mostrados com as mesmas letras (qui-quadrado = 1,599, df = 5, p
= 0,901).
não houve casos de uma pontuação de 0 ARI representando nenhum adesivo no dente. A pontuação média para o ARI todos os grupos experimentais com partículas nanosilver controle e foi de 2, enquanto os grupos experimentais com partículas MicroSilver revelou uma mediana de 1. O teste de Kolmogorov-Smirnov apresentou distribuição normal para os escores do IRA (Estatística = 0,290, df = 96 , p
= 0,772). O teste do qui-quadrado entre todos os grupos testados, não houve diferença estatística (p = 0,901).
Avaliação de descoloração após a descolagem
por olho verificação visual sem manchas de prata eram visíveis em qualquer dente. Sob 10 × ampliação estereomicroscópica manchas pequenas de prata foram detectados no descanso iniciador /adesivo sobre a superfície do dente em todos os grupos experimentais (Tabela 4, Figura 3) 4 .table número de espécimes que revelam manchas de prata detectadas no âmbito de 10 x de ampliação
Grupos
Número de espécimes
diferença Grupo
TB
0
A
TB + 0,1% (w /w) μAg
2
A
TB + 0,3% (w /w) μAg
1
A
TB + 0,11% (w /w) Nag
4
B
TB + 0,18% (w /w) Nag
6
B
TB + 0,33% (w /w) Nag
9
B
Grupos com as mesmas letras não são estatisticamente diferentes (qui-quadrado carta de teste a: qui-quadrado = 2,089, df = 2, p
= 0,352; qui-quadrado carta de teste B: qui-quadrado = 3,241, df = 2, p
= 0,198). qui-quadrado em todos os grupos mostra diferença estatisticamente significativa (qui-quadrado = 20,074, df = 5, p
= 0,01).
Figura 3 microscópica Representante e imagens SEM dos escores do IRA medianos. A-F: 10 × ampliação; setas marca detectadas manchas de prata. homólogos a-f SEM (45 ×) da mesma amostra. A e, de uma espoleta (Transbond XT); B e b, iniciador e 0,1% (w /w) MicroSilver; C e C iniciador e 0,3% (w /w) MicroSilver; D e d, iniciador e 0,11% (w /w) nanosilver; E e E, iniciador e 0,18% (w /w) nanosilver; F e F, primer e 0,33% (w /w) nanosilver.
O teste de Kolmogorov-Smirnov não mostrou distribuição normal para pontos de prata (Estatística = 0,142, df = 96, p
= 0,000). O teste do qui-quadrado entre todos os grupos testados apresentaram uma diferença estatisticamente significativa (qui-quadrado = 20,074, df = 5, p
= 0,01), revelando significativamente mais dentes com manchas de prata nos grupos experimentais com partículas nanosilver aplicadas quando comparado com os grupos experimentais com partículas MicroSilver incorporados controlo ou. O teste do qui-quadrado entre primer, primer e 0,1% (w /w) MicroSilver e primer e 0,3% (w /w) MicroSilver não apresentou diferença estatisticamente significativa (p = 0,352
). O teste do qui-quadrado entre o iniciador e 0,11% (w /w) nanosilver, iniciador e 0,18% (w /w) nanosilver e iniciador e 0,33% (w /w) nanosilver foi estatisticamente significativamente diferente do dos grupos experimentais com controlo e partículas adicionados MicroSilver (p
= 0,001).
Discussão
com base em nossos resultados in vitro
, nem SBS nem escores do IRA foram significativamente afetadas pela adição de MicroSilver ou nanosilver partículas de diferentes tamanhos. Ahn et al. [20] adicionaram-se 250 ppm e 500 ppm de nanoparticulas de prata, com um tamanho menor que 5 nm, em combinação com partículas de sílica nanométricos-se a adesivos compostos experimentais auto-misturado. Eles descobriram que os valores SBS medidos em pré-molares humanos não diferiram significativamente entre os adesivos compostos experimentais e adesivos convencionais. Embora nós adicionamos nanopartículas de prata mais extensivamente e em maiores concentrações do que Ahn et al. [20], descobrimos que nossos resultados SBS eram comparáveis com a deles [20]. Seguindo o nosso procedimento experimental, Akhavan et al. [21] adicionou nanopartículas de prata para Transbond XT ™ primário; No entanto, eles usaram concentrações mais elevadas (1%, 5% e 10%) de nanoparticulas de prata, e adicionou-se 5% de hidroxiapatite para as misturas. Além disso, eles mediram SBS em pré-molares humanos com uma velocidade de 0,5 mm /min o que torna impossível comparar os seus valores SBS com a nossa [35]. Sadat-Shojai et al. [36] descreveu a influência na resistência de união de nanopartículas incorporadas em materiais adesivos dentinários. SBS aumentou com a incorporação de 0,2% de nanopartículas de hidroxiapatite e depois diminuiu em concentrações mais elevadas [36]. Os autores discutiram se as concentrações mais elevadas de nanopartículas que agregar e, por conseguinte, interagir com o nanomaterial, o que pode novamente conduzir a defeitos na matriz. De acordo com Sadat-Shojai et ai. [36] e Ahn et al. [20], as concentrações de partículas nanosilver de até 0,33% (w /w) não interferem com a matriz do iniciador ou o adesivo. A concentração utilizada por Akhavan et ai. [21] poderia estar em uma faixa que poderia afetar a matriz.
Os escores do IRA registrados variaram entre 1 e 3 nos diferentes grupos e não diferiu significativamente entre os grupos controle e experimental. Nem a incorporação de partículas MicroSilver nem partículas nanosilver afetado a falha de suporte /adesivo. O'Brien et al. [37] concluiu que a avaliação da pontuação ARI é bastante subjetiva. Portanto, escores do IRA foram medidos duas vezes. Não foram encontradas diferenças nestas duas determinações.
Muitos estudos têm investigado partículas nanosilver e seus efeitos potenciais sobre bactérias ou células animais [24,38-43]. No nosso in vitro
estudo não investigou a liberação de nanosilver na saliva, mas estes estudos devem ser considerados. A prata micropartículas examinado não é citotóxico e é certificada para aplicações médicas (ISO 10993-5) [44,45]. Bürgers et ai. [46] em um estudo in vitro
aplicado MicroSilver à resina composta X-Flow (Dentsply De Trey). Eles encontraram efeitos anti-aderentes e antimicrobianos significativos sobre a superfície do compósito [46]. Compostos de prata ou prata
têm sido repetidamente adicionado a materiais restauradores em odontologia restauradora [27,28,47]. Infelizmente, o uso desses materiais resultou em restaurações e /ou dentes [28,29,47] descoloridos. Kawasaki et ai. [47] comparou o efeito protetor do diamino fluoreto de prata com hexafluorosilicate de amônio na desmineralização da dentina. diamino fluoreto de prata produziu uma profundidade rasa desmineralizada, mas manchado os dentes pretos devido à sulfonization. Investigar a localização das duas soluções, eles descobriram que a prata do fluoreto de diamino de prata cobriam a superfície do mineral e o silício do hexafluorossilicato de amónio foi localizado na lesão mineral [47]. Em nosso estudo, descoloração prata visível não foi detectado após a descolagem. No entanto, usando 10 × ampliação, encontramos dentes com manchas de prata levemente espalhados na área de residual primer /adesivo. Adição de prata micropartículas (tamanho de partícula de 3,5-18 uM) para o iniciador resultou numa ligeira aparecimento de manchas de prata, sem qualquer impacto estatisticamente relevante. O número de dentes com manchas de prata aumentou significativamente com a adição de nanopartículas de prata (tamanho de partícula 12,6-18,5 nM). Cheng et ai. [48] adicionou nanopartículas de amônio quaternário e prata para o primer de Scotchbond adesivo Multi-Purpose. Eles observaram que este primário tinha uma estética /cor semelhantes aos do controlo [48]. Estes autores concluíram que a elevada área superficial das nanopartículas de prata proporcionou um efeito potente em um nível de enchimento de baixa para evitar a influência negativa sobre a cor e as propriedades mecânicas. Em um segundo estudo, Cheng et al. [49] adicionou nanopartículas de prata (tamanho de partícula de 2,7 nM) a resina contendo um fosfato de cálcio amorfo. Eles verificaram que a adição de 0,042% de nanopartículas de prata transmitida nenhuma influência sobre a cor ou a resistência à flexão. Maiores concentrações de 0,175% revelou uma cor acastanhada e uma queda na força. Portanto, eles recomendado a adição de apenas uma baixa concentração de nanopartículas de prata. Besinis et ai. [50] aplicada recentemente uma solução de nanopartículas de prata (o tamanho de partícula de 56,8 ± 18,6 nm) e uma solução de nitrato de prata (o tamanho de partícula de 52,8 ± 18,6 nm) para discos de dentina humanos. Ambas as soluções exibiram um efeito antibacteriano [50], mas apenas a solução de prata de nanopartículas obtida uma correspondência de cor clinicamente aceitável, enquanto que a solução de nitrato de prata produziu resultados esteticamente inaceitável [50]. Mais estudos são necessários para investigar se os pontos observados neste estudo in vitro
podem ser removidos por limpeza após a descolagem. Se assim for, a incorporação de partículas de prata poderia ser uma oportunidade para reduzir a colonização bacteriana durante o tratamento ortodôntico.
Usamos incisivos bovinos para este vitro
estudo, devido à dificuldade de obtenção de dentes humanos intactos de qualidade e quantidade suficiente . Esta utilização é aceitável para os estudos de ligação em vez dos dentes humanos de acordo com a norma DIN 13990 [32], e estes dentes são frequentemente utilizados em estudos [51]. Existem similaridades entre bovina e humana em esmalte de orientação do cristal, as dimensões exteriores dos prismas, e a composição de proteína da matriz do esmalte [52]. Todos os autores leram e aprovaram o manuscrito final.
