irrigação oral, da arte abstracta
Fundo
O objetivo deste estudo in vitro in-foi investigar o potencial de remoção de biofilme em regiões dente interproximal usando limpeza intervalar com um irrigador oral ou uma escova de dentes sónica.
Métodos
biofilmes de três espécies (Streptococcus mutans
(OMZ 918), Streptococcus oralis
SK 248 (OMZ 60), Actinomyces naeslundii
(OMZ 745)) foram cultivadas em discos de hidroxiapatite durante 3 dias em meio de cultura. A cada 24 h, as amostras foram incubadas durante 15 min em solução de resazurina (isto é, meio de cultura e 10% v /v alamarBlue®) para medir a actividade metabólica com um espectrofotómetro de fluorescência em unidades de fluorescência relativas (RFU) no início do estudo. Em seguida, os espécimes foram fixados em dispositivos que prendem interproximal e foram submetidos a tratamento com um irrigador oral (WF; Waterpik® Sensonic WP-100E), uma escova de dentes sónica ativa (WPA), ou uma escova de dentes sónica inativo (WPi; Waterpik® Sensonic SR-3000E) por 10 s (n
= 18 /grupo). biofilmes não tratados serviram como controle (CO). Após o tratamento, a actividade bacteriana foi re-medida, e as amostras foram re-cultivadas em meio fresco durante 24 h até ao próximo procedimento de limpeza. No total, a limpeza foi repetido em intervalos de três dias de tratamento (D1, D2, D3). Após D3, imagens de SEM foram tomadas (N
= 8) e CFU foi medido (n = 3
). A actividade metabólica foi analisada para cada disco separadamente, os valores de RFU foram em médias de D1 a comparar a estabilidade inicial de biofilme, e proporções de valores de linha de base e pós-tratamento foram comparados. Os resultados foram analisados usando ANOVA com o teste post-hoc Scheffé, ou Kruskal-Wallis com post-hoc de teste de Mann-Whitney.
Resultados da linha de base Median RFU valores de d1 resultou em 7.821,8 RFU (intervalo interquartil = 5114,5) . Maior redução na atividade metabólica foi gravado de forma significativa para o irrigador oral utilizado por 10 s (actividade residual por dia d1: WF 17,9%, WPA 58,8%, WPi 82,5%, CO 89,6%; D2: WF 36,8%, WPA 85,2%, WPi 82,5%, CO 90,0%; d3:. WF 17,2%, WPA 79,6%, WPi 96,3%, CO 116,3%). MEV de amostras não tratadas (CO) e amostras tratadas com a escova de dentes sónica (WPA e WPi) mostrou enormes quantidades de biofilme, enquanto os espécimes tratados com irrigantes orais (WF) revelou quase nenhum bactérias. CFU dados confirmaram as graduações entre os grupos.
Conclusões
limpeza das regiões interproximais melhor conseguida com sucesso um irrigador via oral, em comparação com a utilização de uma escova de dentes sónica. (350/350 palavras)
Palavras-chave
alamarBlue remoção ensaio intervalar biofilme Interproximal sistema de irrigação Oral material suplementar biofilme de Sonic escova Electrónicas | A versão online deste artigo (doi:. 10 1186 /s12903-015- 0079-6) contém material suplementar, que está disponível para usuários autorizados.
Fundo
cárie e periodontite são causadas por biofilme bacteriano, acumulando nas superfícies dos dentes e tecidos moles bucais. Como a maioria dos dispositivos de higiene bucal não são suficientes para chegar a todos os nichos e ângulos na cavidade oral mecanicamente, as regiões interproximais muitas vezes só são afetados pelas propriedades da pasta de pasta de dente e as forças hidrodinâmicas produzidas durante a escovação dos dentes. Para determinar os efeitos hidrodinâmicos maiores, muitos estudos investigaram o efeito de dente sónica e manual escovar em biofilmes, assim como diferenças dentro de vários tipos de escovas de dentes sónicas. Dependendo do tipo das escovas de dentes sónicas, escovas de dentes lado-a-lado resultar mais frequentemente em maior redução de biofilme de 50%, enquanto escovas de dentes multidimensionais remover menos biofilme [1-3]. Comparando diferentes lado-a-lado escovas de dentes sónicas entre si mostra diferenças significativas entre os modelos que variam de 9 a 80% [4]. No entanto, até agora, a maioria das investigações sobre o chamado "não-contato remoção do biofilme 'não foram realizadas utilizando dispositivos interproximal, mas, por exemplo, escovas de dentes sónicas, instalados com distâncias definidas ajustados diretamente para o centro da superfície do disco do biofilme revestido [3-7]. Usando esta abordagem, as forças hidrodinâmicas, formadas pelos dispositivos orais têm acesso directo a superfície do biofilme e batida, consoante a distância, com a intensidade máxima. Embora descrevendo uma abordagem escovação sem contato, ele ainda pode diferir de situações interproximal reais. Adams et. al [1] investigaram o efeito da remoção monospecies-biofilme usando um modelo interproximais com diferentes distâncias das pontas das cerdas. Analisando os emergentes velocidades bolha das diferentes escovas de dentes sónicas, eles estimaram valores de tensão de cisalhamento entre 0,5 e 0,9 Pa, resultando em redução de biofilme até 57% para o lado-a-lado e 16% para escovas de dentes-de rotação de oscilação em um raio de 0 - 5 mm. Frey (2012) desenvolveu um dispositivo de dente interproximais com um sensor de tensão de corte integrado e analisada a tensão de cisalhamento em distâncias interproximais de 0,2 milímetros usando diferentes escovas de dentes lado-a-lado [8]. Dependendo do tipo de escova de dentes e o seu modo de acção, os valores de tensão de cisalhamento de até 10 Pa foram medidos. No entanto, os valores de tensão de cisalhamento mais pronunciados com maior remoção do biofilme pode ser avaliada pela maior fluxo de fluido produzido por sistemas de irrigação oral (SRO). Estudos que investigaram a utilização de jactos de água dentários indicado reduzidas mediadores pró-inflamatórias, tais como IL-1ß e PGE
2 e a remoção do biofilme placa salivar mais de 99%, independentemente da ponta do jacto de água utilizado [9-11]. Enquanto ORS foram analisados principalmente em ensaios clínicos, a determinação do resultado na redução do sangramento, gengivite e biofilme placa, a remoção dos biofilmes interproximais não foi investigada ainda [12, 13].
Por conseguinte, o objectivo deste estudo in vitro foi- investigar o efeito de um irrigador oral e uma escova de dentes de lado-a-lado em multiespécie remoção do biofilme utilizando um dispositivo de dente interproximal. Além disso, os ciclos de tratamento usando os ORS ou Escova de dentes sónica foram repetidos em intervalos de 24 h para simular e analisar o efeito de repetição de padrões de higiene oral.
Métodos
A formação de biofilme
estirpes bacterianas foram obtidos a partir do Institute for Oral Biologia, Seção de Microbiologia Oral e general Imunologia da Universidade de Zurique, Zurique, Suíça. Antes de formação de biofilme, as estirpes (Streptococcus mutans
OMZ 918, Streptococcus oralis
OMZ 607, Actinomyces naeslundii
OMZ 745) foram obtidas a partir de pré-culturas semeadas em agar sangue de Columbia ovelhas placas (CSBA) (bioMérieux, Marcy l 'Etoile, França). As colónias foram propagadas planctónicas num substrato composto por 30% de solução de saliva e 70% modificado meio fluido universal (mFUM) [14] separadamente num agitador rotativo a 37 ° C em frascos utilizando gás-Paks para criar condições anaeróbicas (GENbox anaer e GENbag anaer , a bioMérieux, Marcy l'Etoile, França). Portanto, saliva fresca foi adquirida por um doador saudável e centrifugado duas vezes durante 30 minutos de 13400 rpm. Na sequência do parecer do Comité do Cantão de Zurique, Suíça Ética, nenhuma aprovação ética é necessária para a doação de saliva, como explicado acima (n. 0324/2013 e não. 50/14). O sedimento foi removido de cada vez e o sobrenadante restante foi diluída 1: 2 no seio de cloreto de sódio (NaCl a 0,9%) antes da filtração estéril (filtro syrenge TPP com 0,2 uM poros, Faust, Schaffhausen, Suíça). A solução resultante foi de saliva utilizado em todas as experimentações. Fum, um meio de caldo de triptona de levedura com base bem estabelecida foi descrita por Loesche et ai. [15]. FUM continha (por litro de água destilada): 10 g de triptona, 5 g de extracto de levedura, 3 g de glucose, 2 mg de hemina, 1 mg de menadiona, 0,5 g de cloridrato de cisteína, 0,1 g de ditiotreitol, 2,9 g de 0,9% de NaCl, 0,5 g de Na 2CO 3, 1 g de KNO 3, 0,45 g de K 2HPO 4, 0,45 g de KH 2 PO? 4, 0,9 g de (NH 4) 2SO 4, e 0,188 g de MgSO 4 * 7h20. Foi modificado, completando /l de tampão de Sorensen 67 mmole para um pH final de 7,2. A glucose foi substituída por 3 g de uma mistura 1: 1 de glicose e de sacarose. A modificação utilizada neste estudo foi adotada a partir dos protocolos de biofilme Zurique [14]. Após cerca de 6-7 horas, as soluções bacterianas foram ajustados para a densidade óptica (DO550) de um e misturados num tubo como inoculo. Para quantificar os inóculos por ml, unidades formadoras de colónias (CFU) foram semeadas em placas de CSBA e incubadas anaerobicamente em frascos utilizando gás-paks (t = 2 d). Enquanto isso, os discos de hidroxiapatite sinterizada estéreis (O a 5 mm, Clarkson Chromatography Products, South Williamsport, EUA) foram incubados em 800 ul de solução não-saliva estimulada durante 4 h a agitação suave, para formar uma película (100 rpm à temperatura ambiente) . Para a formação de biofilme, os discos revestidos com película foram em seguida colocados em novas placas de cultura celular de poliestireno de 24 poços e incubadas com 1 ml do inoculo preparado com agitação suave durante 24 h em frascos a 37 ° C, usando gás-Paks (GENbox anaer e GENbags anaer, bioMérieux, Marcy l'Etoile, França). Mídia foi funciona diariamente antes de procedimentos de tratamento e imediatamente após o tratamento através da transferência das amostras nas placas novas cheias com meio fresco (solução de saliva 30% + 70% mFUM). pH foi controlado diariamente no meio durante a noite logo após a primeira mudança de suporte, utilizando um medidor de pH (Mettler-Toledo Fácil Five, Mettler-Toledo AG, Schwerzenbach, Suíça) Tratamento.
Os espécimes foram divididos em quatro grupos. Três experimentos independentes foram realizados para obter n
= 18 espécimes por grupo (primeiro experimento n
= 4, segundo n
= 6, último experimento n
= 8 espécimes por grupo). Cada experimento consistiu de três dias de tratamento (D1, D2, D3). Antes de cada tratamento, as medições da actividade metabólica foram realizados para obter valores de linha de base para cada espécime. Em seguida, as amostras foram colocadas cuidadosamente dentro de um dispositivo interproximais com 2 amostras a uma distância da face de 0,5 mm a cara (Fig. 1). O dispositivo de escovagem para escovas de dentes eléctricas foi construído em uma cooperação entre o Instituto de Dinâmica de Fluidos, ETH Zürich e do Departamento de Odontologia Preventiva, Periodontia e Cariologia, da Universidade de Zurique, Suíça. Para a experimentação, 25 ml de água de 36 ° C, foi pipetada para dentro do dispositivo para cobrir as regiões interproximais e os espécimes. Para o WF-grupo, o irrigador oral (Waterfloss, Waterpik® Sensonic WP-100E) foi ajustada usando o JT-100E clássico Jet Tip em um ângulo de 90 ° em relação à região interproximal como descrito nas informações do fabricante. O controlo de pressão foi colocado no nível 10 (mais alta pressão de água) e activado durante 10 s. Posteriormente, as amostras foram cuidadosamente retirado do dispositivo interproximal e restaurada em placas com NaCl a 0,9%. Para o WPA-grupo, a escova de dentes sónica (Waterpik® Sensonic SR-3000E) foi ajustado para o dispositivo utilizando o respectivo cabeça da escova de série com uma carga da cabeça da escova na região interproximal de & lt; 0,9 N medido para escovas de dentes sónicas (carga total de 70 ± 5 g) [2, 16]. A escovagem foi realizado durante 10 s sob condições estáticas. Para os espécimes do WPi-grupo, os procedimentos foram repetidos para as escovas inativados (fora de energia). Espécimes sem tratamento foram utilizados como grupo controle (CO). FIG. 1 um projecto das dispositivo de fixação usado com uma carga ajustável (*); posição da amostra, interproximal no interior da câmara (seta). dispositivos orais podem ser posicionados perpendicularmente às amostras fixadas, como ilustrado em b) para a escova de dentes sónica e c) para o irrigador bucal
ensaio alamarBlue e as unidades formadoras de colónias
antes da experimentação, o ensaio alamarBlue foi validado em preliminar testes [ver arquivo adicionais 1]. O inoculo acima descrito foi diluída 1: 2 em solução salina tamponada com fosfato em sete séries. Amostras de cada série de diluição foram determinados por unidades formadoras de colónias, resultando em séries de diluição de 5,5-350 × 10 6 CFU /mL. Dez amostras de cada série foram então usados para medições cinéticas. Portanto, as amostras foram incubadas em poços contendo 10 vol.% Celular alamarBlue Viabilidade Reagente de Ensaio (Life Technologies, Zug, Suiça) e medida num espectrofotómetro com leitor de placas a 560 nm de excitação /585 nm de emissão a 37 ° C (Spectramax M2, molecular Devices, Bucher Biotec, Basileia, Suíça). As medições foram realizadas a cada 15 min durante 2 horas. As unidades de fluorescência relativa medida de cada diluição foram representados graficamente contra o tempo de incubação. Os resultados destes testes preliminares mostraram taxas iniciais constantes da reacção enzimática dentro de um intervalo de aproximadamente 30% da conversão total do substrato para cada curva de diluição [ver arquivo adicional 1]. Para obter as medições dentro da gama de aumento linear para as experimentações actuais, o tempo de incubação na solução alamarBlue foi ajustado para 15 min. Compra de experimentação, os discos de hidroxiapatite revestidos com biofilme foram armazenadas primeiro de uma nova placa de com 0,9% de NaCl evitar mais crescente durante o tratamento. Em seguida, as amostras foram transferidas cuidadosamente em placas de 96 poços e incubadas em 300 ul de solução de alamarBlue contendo meio fresco (solução saliva 30% + 70% mFUM) com 10 vol.% AlamarBlue sob condições anaeróbias. Além disso, dois poços foram cheios com solução em branco alamarBlue (sem espécimes) e um poço foi cheio com bactérias centrifugadas do inóculos planctónicas em solução alamarBlue para obter valores para a actividade metabólica máxima. Após 15 minutos, 200 ul de cada solução alamarBlue foi pipetada para novas placas de 96 cavidades e a actividade metabólica foi medida num espectrofotómetro com leitor de placas em /585 nm de emissão de 560 nm de excitação. As unidades de fluorescência relativas resultantes (RFU) foram definidos como valores basais ou RFU pré-tratamento. Após medições, os espécimes foram armazenados em NaCl 0,9% e mais experiências foram conduzidas (tratamentos utilizando os diferentes dispositivos orais). Em seguida, os valores de pós-tratamento foram obtidas utilizando o ensaio alamarBlue tal como descrito antes. Após RFU-medidas, as amostras foram transferidas para o substrato fresco para permitir novo crescimento e se retirou com os procedimentos idênticos 24 h mais tarde. Portanto, as amostras foram distribuídas nos mesmos grupos. Ao todo, cada espécime foi submetido a três ciclos de tratamento (D1, D2, D3).
Após o último tratamento e medição utilizando alamarBlue (D3), três amostras de cada grupo foram analisados adicionalmente utilizando CFU. Portanto, as amostras foram agitadas em NaCl 1 ml de 0,9% durante 2 min e ultra-sons durante 5 s. Cada suspensão bacteriana foi diluída em NaCl a 0,9% e colocado em placas em agar de sangue de ovelhas Columbia (CSBA) placas (bioMérieux, Marcy l'Etoile, França). CSBA placas foram então incubadas em frascos a 37 ° C, usando gás -paks (GENbag anaer, bioMérieux, Marcy l'Etoile, França) durante 2 dias.
Digitalização microscópica de electrões análise
para SEM, duas amostras por grupo (n = 8
), foram utilizados após o último ciclo de tratamento (D3). As amostras foram lavadas com solução de NaCl a 0,9% e fixadas em solução de glutaraldeido a 4% (em tampão fosfato de sódio 0,1 M de potássio, pH 7,0) durante pelo menos 24 h. A desidratação foi realizada gradualmente (2 x 15 min em etanol a 50 vol.%, 2 x 15 min em etanol a 70 vol.%, 2 x 15 min em etanol a 80 vol.%, 2 x 15 min em etanol a 90%, 3 x 20 min em etanol a 96% e 2 x 60 min em etanol absoluto). Antes de ouro por pulverização catódica revestimento da secagem ponto crítico foi realizado. Espécimes de todos os grupos foram examinados após a última etapa do tratamento repetido periodicamente (D3). Além disso imagens de espécimes sem bactérias foram tomadas. As ampliações de 45x foram levados para as superfícies de imagem do espécime e 500x para mostrar as características da superfície mais detalhados.
Análise estatística
A actividade metabólica foi analisada separadamente para cada disco, e a razão de pós-tratamento com os valores de base foram comparados dentro do tratamento dias (D1, D2, D3). A análise dos dados foi realizada utilizando ANOVA com o teste post-hoc de Scheffe, ou Kruskal-Wallis com post-hoc de teste de Mann-Whitney.
Resultados da linha de base Median RFU valores de d1 (todos os grupos) resultou em 7.821,8 (intervalo interquartil = 5114,5) RFU. RFU valores basais de d2 (RFU pré-tratamento) mostrou maior atividade metabólica do que d1, independentemente do grupo de tratamento (média ± SD, WF: 12045 ± 4414, WPA: 11832 ± 4331, WPi: 10600 ± 3362, CO: 10508 ± 3153). Basais RFU valores de d3 revelou atividade metabólica reduzida em comparação com D1 e D2 (média ± SD, WF: 5864 ± 3974, WPA: 6768 ± 3753, WPi: 6531 ± 4490, CO: 6878 ± 4093; Tabela 1). RFU valores pós-tratamento foram relacionados com os valores de RFU de linha de base para calcular a actividade metabólica residual em percentagem. Significativamente maior redução na atividade metabólica em relação à linha de base foi mostrado pela WF-grupo (irrigador oral) durante 10 s para todos os ciclos de tratamento (D1: 17,9%, d2: 36,8% e d3: 17,2%). O WPA-grupo (Escova de dentes sónica ativa) mostraram uma redução significativamente a atividade metabólica em d1, ao passo que nenhuma redução significativa foi medida em tratamento d2 ciclo e d3 (d1: 58,8%, d2: 85,2%, d3: 79,6%). As amostras tratadas com a escova de dentes sónica inactivo (IPA) e os espécimes não tratados (CO) não mostraram nenhuma redução significativa da actividade do biofilme em todos os (d1: WPi 82,5%, CO 89,6%; D2: WPi 82,5%, CO 90,0%; D3: WPi 96,3 %, 116,3% de CO; Fig. 2). eletrônica de varredura de imagens microscópicas do WF-grupo revelou superfícies quase livre de biofilme com bactérias residuais e matriz parcialmente despojado-off sobre as áreas externas (Fig. 3 a e b). Imagens da WPA, WPi- e CO-grupo mostrou enormes quantidades de biofilme com picos de ilhas bacterianas e agregados (Fig. 3). dados UFC mediana resultou em 1,0 × 10 ^ 6 (WF), 2,2 × 10 ^ 9 (WPA), 1,1 × 10 ^ 11 (IPA) e 1,8 × 10 ^ 11 (CO). Dois exemplares do CO-grupo foram incontáveis (& gt; 10 ^ 11; Fig. 4) .table 1 Média ± SD de tratamento pré e pós em unidades de fluorescência relativa [RFU] para os diferentes dispositivos em pontos de tempo d1-d3
dias de tratamento
Grupos
pré-tratamento [RFU] média ± SD
Pós-tratamento [RFU] significa ± SD
d1
WF
7077 ±
2564
1,498 ±
1484
WPA
7384 ±
2434
4715 ±
2841
WPi
6832 ±
3202
5944 ±
3244
CO
6669 ±
3157
5930 ±
2845
d2
WF
12045 ±
4414
4540 ±
2451
WPA
11832 ±
4331
9966 ±
3414
WPi
10600 ±
3362
8953 ±
3788
CO
10508 ±
3153
9609 ±
3564
d3
WF
5864 ±
3974
885 ±
564
WPA
6768 ±
3753
4627 ±
2087
WPi
6531 ±
4490
4757 ±
1832
CO
6878 ±
4093
5979 ±
2318
WF
irrigador oral, WPA
escova de dentes sónica ativa, WPi
inativa escova de dentes sónica, CO
Controle
Fig. 2 Boxplots de actividade residual metabólica em% do RFU valores basais de diferentes condições experimentais, com mediana (linha horizontal interior), 1º e 3º quartil (inferior e linha superior da caixa) e 10 e percentil 90 (bigodes). WF = irrigador por via oral; WPA = Escova de dentes sónica, ativa; WPi = Escova de dentes sónica, inativo; CO = Controlo. As diferenças significativas são ilustrados acima boxplots correspondente
Fig. 3 imagens SEM de todos os grupos após o último tratamento (D3). As amostras após o tratamento com o WF irrigador oral (a, b), a escova de dentes sónica activo WPA (c, d), a escova de dentes sónica inactivo WPi (E, F), o grupo de controlo CO sem tratamento (g, h) e as amostras não apresentaram bactérias (I, j). Áreas com tosquiado-off biofilme são mostrados em a) e b). As ampliações de 45x (A, C, G, E, I, barra de escala = 100 pm) e 500X (b, d, f, h, j; escala bar = 10 pm) foram usadas
fig. 4 Boxplots de bactérias residuais após D3 em ln CFU /ml (n =
3 por grupo). Dois exemplares do CO-grupo revelou placas incontáveis (& gt; 10 ^ 11). O UFC mediana (linha horizontal interior) resultou em 1,0 × 10 ^ 6 (WF), 2,2 × 10 ^ 9 (WPA), 1,1 × 10 ^ 11 (IPA) e 1,8 × 10 ^ 11 (CO). WF = irrigador por via oral; WPA = Escova de dentes sónica, ativa; WPi = Escova de dentes sónica, inativo; CO = Controle
Discussão
mais baixa atividade metabólica residual de biofilmes interproximal em d1, d2 e d3 foi realizada com o irrigador oral. redução significativa na atividade também foi mostrado após tratamentos sobre d1 com a escova de dentes sónica ativa. CFU dados das amostras após o tratamento no espelho D3 as mesmas graduações entre os grupos. No entanto, a análise dos padrões de tratamento intervalares (D1-D3) em destaque, independente dos diferentes processos de tratamento, a alta taxa de re-crescimento em cada amostra após 24 h. Considerando apenas a actividade metabólica dos diferentes grupos após 24 h (linha de base de D2 ou D3, Tabela 1), não parecem não há diferenças em tudo. redução de biofilme de mais de 63-83% usando um oral resultados irrigantes na mesma atividade biofilme como no grupo controle (CO) sem tratamento, após 24 h. No entanto, este estudo investigou principalmente atividade metabólica de biofilmes. As diferenças na patogenicidade de biofilmes não tratados ou tratados não foram analisados. Além disso, os resultados do tratamento intervalar só foram mostrados ao longo de um período de três dias. rebrota biofilme e resistência ao tratamento pode mudar após períodos maiores de limpeza.
O tempo de aplicação do irrigador oral foi fixado em 10 s. Ainda, a actividade residual num intervalo de 17-37% foi medida. Em relação às imagens SEM com o irrigador oral, regiões de matriz tosquiadas-off e áreas de biofilme residuais nas regiões disco exteriores são mostrados. Isto pode ser explicado por o jacto de água central do irrigador oral, o que parece ser muito definido e não atinja toda a superfície dos discos revestidos com biofilme na mesma medida. regiões marginais do disco, que não estavam em contato direto com o jacto de água pode resultar em valores mais elevados de bactérias residuais, devido à menor força de cisalhamento. Além disso, o uso de biofilmes em lotes leva a aderência bacteriana em todas as superfícies do disco. Os lados dos discos não foram alcançados por meio de dispositivos por via oral e podem conter bactérias residuais. O irrigador oral foi aplicado perpendicularmente ao espaço interdental, que conduz a um jacto tangencial à superfície do biofilme. bactérias individuais sobre os lados das amostras podem ter permanecido sem tratamento, no entanto, a sua influência parece bastante desprezável devido à sua quantidade menor. atividades de biofilme de 59 - 85% permaneceu após a limpeza com a escova de dentes sônica por 10 s sem contato. Estudos anteriores relataram não-contacto remoção do biofilme de mais do que 50%, em escovas de dentes de lado-a-lado [1, 2, 17-19]. A maior parte destes estudos foram analisados microscopicamente após coloração utilizando um microscópio confocal de varrimento laser. áreas seleccionadas das superfícies tratadas foram digitalizados e volumes de biofilme restantes foram calculados e definidos em relação ao controle grupos. Em contraste com o método utilizado no presente estudo, as áreas de superfície tratadas apenas foram incluídos na análise. No entanto, estes estudos não para comparar cada espécime separado, antes e depois de cada tratamento. A análise microscópica fornece apenas uma visão para os espécimes após o tratamento, devido a procedimentos de coloração irreversíveis. O uso de alamarBlue permite medições repetíveis. Cada amostra pode ser analisada em diferentes pontos de tempo e efeitos de tratamentos intervalares pode ser observada usando o modelo idênticos. Seu pedido de quantificação de biofilme foi investigado em vários estudos antes de [20, 21]. Também foi validado para o biofilme de três espécies utilizadas nas experiências (ver arquivo adicional 1). Uma vez que a maioria dos
investigações sobre a assim chamada "sem contacto remoção do biofilme 'foram executadas por dispositivos orais posicionado directamente em direcção ao centro do biofilme revestido superfícies do disco em vez de usar dispositivos interproximal, e devido à elevada variedade de tempo de aplicação, distância para amostra superfícies e modelos de biofilme utilizado, comparações entre estudos individuais devem ser feitas somente com muito cuidado.
as diferenças entre os modelos de biofilme também pode ser observado com referência à superfície do material usado como substrato. secções de esmalte humano são muitas vezes substituídos por titânio [4], de vidro [1, 3, 6, 17] ou discos de hidroxiapatite [2, 14, 18]. O presente estudo foi realizado com discos de hidroxiapatita como analógico esmalte dos dentes para evitar possíveis padrões de adesão bacteriana não homogéneos ao longo esmalte rachaduras e fissuras.
Com relação ao melhor desempenho do irrigador oral como em comparação com o sónica escova activado tem de ter em importa que em ambos os casos sem creme dental foi envolvido, embora usando uma escova de dentes raramente é esse o caso. A utilização adicional de pasta de dentes, juntamente com a escova de dentes pode ter activado sónica levar a uma maior remoção de biofilme devido a um efeito mecânico de partículas a partir da pasta de dentes, e também devido a outros ingredientes, por exemplo, tensioactivos. Portanto, para estudos posteriores a influência adicional de pasta de dente deve ser investigada, bem. No entanto, foi a intenção deste estudo para investigar a influência específica dos dispositivos sem a interferência de outros fatores. Para mais pesquisa, o efeito de procedimentos de limpeza intervalar mais ajudaria a compreender o efeito a longo prazo de diferentes padrões de higiene oral em biofilmes interproximal. A comparação de escovação sem contacto por dispositivos interproximal e pela escovação sem contacto por dispositivos orais diretamente posicionada na direção do biofilmes facilitariam comparações entre diferentes modelos de estudo.
Conclusões
Com base nos resultados, a limpeza das regiões interproximais por hidrodinâmico fluxo de um irrigador oral pode conseguir a remoção mais eficaz do biofilme interproximal em comparação com escovas de dentes sónicas
abreviações
UFC:.
unidades formadoras de colónias
CO:
Controle amostras (espécimes revestidos com biofilme sem tratamento)
d1:
primeiro dia de tratamento
d2:
segundo dia de tratamento
d3:
terceiro dia de tratamento
mFUM:
modificado fluido universal meio
NaCl:
cloreto de sódio
ORS:
sistemas de irrigação Oral
RFU:
unidades de fluorescência relativa
SEM:
microscópio eletrônico de varredura
WF:
Waterpik® Sensonic WP-100E: irrigador oral,
WPA:
Waterpik® Sensonic SR-3000E: escova de dentes sónica, ativo
WPi:
Waterpik® Sensonic SR-3000E: escova de dentes sónica, inativo
declarações
Reconhecimento
os autores gostariam de agradecer a Beatrice Sener da Clínica de Odontologia preventiva, Periodontia e Cariologia para ela um grande apoio com o SEM Images of Open Access Este artigo é distribuído sob os termos da licença Creative Commons Attribution. (http: //. creativecommons org /licenses /by /4. 0), o que permite uso irrestrito, distribuição e reprodução em qualquer meio, desde que a obra original é devidamente creditado. A renúncia Creative Commons Public Domain Dedication (http: //creativecommons org /publicdomain /zero /1. 0 /.) Aplica-se aos dados disponibilizados neste artigo, salvo indicação em contrário
adicionais. arquivo
arquivo adicionais 1: Validação do ensaio alamarBlue. (DOCX 194 kb) Competindo interesses
Os autores declaram que não têm interesses conflitantes. Contribuições
dos autores
Dr. Tawakoli concebeu esta pesquisa e foi o principal investigador do estudo. Sra Sauer eo Sr. Becker ajudou com a realização do estudo e com questões metodológicas. Dr. Buchalla e Dr. Attin supervisionou o estudo e crítica na revisão do manuscrito. Todos os autores leram e aprovaram o manuscrito final.
